Encapsulación de probióticos . Marcelo Fernando Valle Vargas
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СКАЧАТЬ de residuos de medicamentos veterinarios y otras sustancias químicas exigidos y aceptados en el comercio internacional”. De manera particular, se busca el cumplimiento de lo establecido en la legislación de la Unión Europea. En la Tabla 2 se indican las sustancias a controlar para la tilapia y trucha (INVIMA, 2020).

GRUPOSUSTANCIA
A1Estilbenos: Dienestrol, dietilestilbestrol, hexestrol.
A3Esteroides: Acetato de trembolona, boldenona, metiltestosterona, androlona, estanozolol.
A6Sustancias incluidas en el Reglamento (UE) 37/2010 como farmacológicamente activas: 1. Cloranfenicol; 2. Metabolitos Nitrofuranos: AHD (nitrofurantoína), AOZ (3-amino-2-oxazolidinona), AMOZ (5-metilmorfolino-3-amino-2-oxazolidinona), SEM (Nitrofurazona).
B1Sustancias antibacterianas: 1. Doxiciclina; 2. Oxitetraciclina; 3. Tetraciclina; 4. 4 EPI Clortetraciclina; 5. 4 EPI Oxitetraciclina; 6. 4 EPI Tetraciclina; 7. Clortetraciclina; 8. Florfenicol; 9. Tianfenicol; 10. Sulfas: Sulfatiazol, Sulfadimetoxina, Sulfadoxina, Sulfametoxazol, Sulfadiazina.
B3a1. Compuestos organoclorados: Heptacloro, heptacloro epóxido, 4.4´DDT, 4.4´DDE, 4.4´DDD, Aldrín, Dieldrín, gama clordano, alfa-clordano. 2. Bifenilospoliclorados: PCB 101, PCB 138, PCB 153, PCB 18, PCB 28, PCB 2.
B3cElementos químicos: Plomo, cadmio, mercurio.
B3eColorantes: Verde de malaquita, verde leuco-malaquita, cristal violeta, leucocristal violeta.

      * Durante los últimos años se han venido monitoreando los bifenilos policlorados, Aroclor 1254, Aroclor 1242, Aroclor 1016 y Aroclor 1260, obteniendo resultados inferiores al límite de cuantificación, por lo que a partir de este año se ha decidido monitorear PCB 101, PCB 138, PCB 153, PCB 18, PCB 28, PCB 52.

      Fuente: INVIMA (2020).

      Según este mismo documento, en los cultivos de camarón, trucha y tilapia no se utiliza dietilestilbestrol, zeranol, ampicilina, eritromicina, amoxicilina, sulfadoxina, trimetoprima e ivermectina, pues estas sustancias no representan un riesgo en términos de calidad e inocuidad del producto, por lo que su monitoreo no se ve necesario.

      La resistencia a agentes antimicrobianos es un problema prioritario de seguridad global, que afecta a las especies acuícolas, al ser humano y al ambiente de manera codependiente, por lo que se precisa la adopción de medidas para frenar el uso descontrolado de los antibióticos y buscar alternativas para la prevención de enfermedades de origen bacteriano (Santos y Ramos, 2018). La iniciativa mundial denominada One Health propone como plan de mitigación el Plan Estratégico Nacional de Resistencia Antimicrobiana que pretende lograr una reducción del 20% en el uso de antibióticos para humanos y 30% de uso de antibióticos para tratamiento animal (Yewale, 2014; Booton et al., 2021; WHO, 2014).

      Se han investigado diferentes alternativas biotecnológicas, como la selección de poblaciones de peces resistentes a enfermedades específicas (Barría et al., 2021; 2020), inmunoestimulantes (Villamil et al., 2018), las vacunas (Hoare et al., 2021), los probióticos (Villamil y Esguerra, 2017), los prebióticos (Souza et al., 2020), los simbióticos (Al-Deriny et al., 2020) y los productos vegetales medicinales (Abarike et al., 2020), entre otras, para mejorar la salud de poblaciones de peces como tilapia y así prevenir efectos indeseables por el uso indebido de antibióticos en la salud del pez y su ecosistemas acuático (Melo et al., 2021). De estas alternativas, los probióticos se muestran como una opción amigable con el medio ambiente que le confiere muchos beneficios al pez y a su entorno, como ganancia de peso, mejor absorción de nutrientes, resistencia a patógenos, mejoramiento de la calidad del agua, entre otros (Chauhan y Singh, 2019; Sayes et al., 2018).

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